研究目的
开发一种具有大斯托克斯位移的亮红色发射苯乙烯基探针,用于无洗涤条件下活细胞线粒体可视化,解决现有商业探针(如小斯托克斯位移和背景干扰等)的局限性。
研究成果
探针2是一种高度可靠的亮红色发射型苯乙烯基染料,具有大斯托克斯位移、优异的线粒体选择性及低细胞毒性(LC50 > 20 μM)。它可实现活细胞免洗涤成像,且不受生物分子干扰,在线粒体可视化方面优于现有市售探针。
研究不足
探针2未能对固定细胞中的线粒体进行染色,表明其可能依赖于线粒体膜电位(功能性染料),这限制了其在功能失调线粒体中的应用。该探针在高度非极性和极性溶剂中荧光较弱,可能影响其在不同细胞环境中的性能。本研究聚焦于体外细胞系,未探索体内应用。
1:实验设计与方法选择:
本研究涉及合成新型苯乙烯基染料(探针2)并表征其光学特性,随后应用于活细胞成像以评估线粒体选择性和生物相容性。理论模型采用分子内电荷转移(ICT)解释光物理性质。
2:样本选择与数据来源:
化学合成使用Acros Organics试剂。细胞研究采用COS-7(正常)和A549(癌症)细胞系,分别培养于DMEM和RPMI培养基中,试剂来自Sigma-Aldrich和Fisher Scientific。
3:实验设备与材料清单:
仪器包括Hewlett Packard-8453二极管阵列分光光度计(UV-vis研究)、HORIBA Fluoromax-4荧光光谱仪(荧光研究)、配备63倍油镜的Zeiss LSM 710共聚焦显微镜(成像)、Spectramax 5e微孔板读数器(活力检测)。材料包含商用染料(MitoTracker Green FM、LysoTracker Green DND-26)、CellTiter-Glo发光细胞活力检测试剂盒及多种合成用化学品。
4:6)、CellTiter-Glo发光细胞活力检测试剂盒及多种合成用化学品。 实验流程与操作步骤:
4. 实验流程与操作步骤:通过二醛与4-甲基吡啶盐在乙醇中反应合成探针2,沉淀法纯化。在DCM、DMSO、乙醇、水等溶剂中进行光学表征。细胞染色使用500 nM探针2(37°C,30分钟),无需洗涤直接成像。与MitoTracker Green和LysoTracker Green进行共定位研究。采用CellTiter-Glo试剂盒检测细胞活力。
5:数据分析方法:
以罗丹明6G为标准计算荧光量子产率。使用Zeiss LSM软件和ImageJ分析共定位(曼德尔重叠系数)。通过Origin8软件的剂量-反应公式计算细胞活力LC50值。
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HORIBA Fluoromax-4 spectrofluorometer
Fluoromax-4
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Used for fluorescence emission studies of the probe.
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Zeiss LSM 710 confocal microscope
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Used for fluorescence confocal microscopy imaging of live cells stained with the probe.
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MitoTracker Green FM
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Commercial mitochondria stain used for co-localization studies with the synthesized probe.
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LysoTracker Green DND-26
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LysoTracker
Commercial lysosome stain used to confirm specificity of the probe to mitochondria.
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Hewlett Packard-8453 diode array spectrophotometer
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Hewlett Packard
Used for UV-vis absorption studies of the synthesized probe.
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Spectramax 5e microplate reader
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Spectramax
Used for luminescence readings in cell viability assays.
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Used to assess cell viability and calculate LC50 values for the probe.
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